:: دوره 32، شماره 1 - ( بهار 1401 ) ::
جلد 32 شماره 1 صفحات 63-53 برگشت به فهرست نسخه ها
لقاح آزمایشگاهی در موش: تنوع نژادی درون زاد و برون زاد در پاسخ به تحریک تخمک گذاری و تکوین جنین درمحیط آزمایشگاه
ژاله شاکرزاده1 ، منصوره موحدین 2، اکرم عیدی1 ، نسیم حیاتی رودباری1 ، کاظم پریور1
1- گروه زیست شناسی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی ، تهران، ایران
2- گروه آناتومی، دانشکده پزشکی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران ، movahed.m@modares.ac.ir
چکیده:   (1032 مشاهده)
سابقه و هدف: موش رایج‌ترین مدل حیوانی در تحقیقات تولید مثلی است و به دنبال نیاز ضروری به این مطالعات و همچنین افزایش اهمیت اصول اخلاقی در حیوانات، 4 سویۀ مختلف درون‌زاد و برون‌زاد با هدف انتخاب موش آزمایشگاهی کارآمدتر برای تحقیقات تولید مثلی، مورد ارزیابی قرار گرفت.
روش بررسی: 60  سر موش ماده و 16  سر موش نر به وزن 25 تا 30 گرم و سن 6 تا 8 هفته از سویه‌های Balb/C، NMRI،CD1 و C57 در مراحل مختلف جمع‌آوری تخمک و تکوین جنین تا مرحلۀ بلاستوسیست، در شرایط یکسان، مورد ارزیابی قرار گرفتند وکلیۀ داده‌ها توسط آزمون chi-square تحلیل شدند. 
یافته ها: در بین 4 سویه مختلف، به ترتیب بیشترین تا کمترین درصد زنده ماندن جنین مربوط به موشهای CD1، NMRI، BALB/c و C57 و مقادیر آنها به ترتیب برابر با 9/38، 4/14، 1/9 و 1/3 درصد بود.
نتیجه گیری: با درنظرگرفتن نتایج تحریک ‌تخمک‌گذاری و لقاح آزمایشگاهی، چنین نتیجه میگیریم که با یک روش یکسان، امکان حصول نتیجۀ بهینه  وجود ندارد. نتایج نشان می‌دهد که بالاترین تعداد تکوین جنین تا مرحله 8 سلولی در موش برون‌زاد CD1 مشاهده شد و به نظر می‌رسد که این سویه از موش، مدل مناسب‌تری برای مطالعات تولید مثلی است. همچنین استفاده از محیط‌های کشت متفاوت و درنظرگرفتن فواصل تزریق هورمون و میزان آن، احتمالا می‌تواند تولید جنین در شرایط آزمایشگاهی را بهبود بخشیده و گرفتن نتیجۀ دلخواه با استفاده حداقل تعداد حیوان را امکان‌پذیر سازد.
واژه‌های کلیدی: لقاح آزمایشگاهی، تحریک تخمک گذاری، موش درون زاد و برون زاد، درمان ناباروری
متن کامل [PDF 399 kb]   (329 دریافت)    
نيمه آزمايشي : موردي- شاهدي | موضوع مقاله: جنين شناسي
دریافت: 1400/4/12 | پذیرش: 1400/7/6 | انتشار: 1401/1/1
فهرست منابع
1. Kupka MS, Ferraretti AP, De Mouzon J, Erb K, D'Hooghe T, Castilla JA, et al. Assisted reproductive technology in Europe, 2010: results generated from European registers by ESHRE. Hum Reprod 2014;29:2099-113. [DOI:10.1093/humrep/deu175]
2. Lane M, Gardner DK. Ammonium induces aberrant blastocyst differentiation, metabolism, pH regulation, gene expression and subsequently alters fetal development in the mouse. Biol Reprod 2003;69:1109-17. [DOI:10.1095/biolreprod.103.018093]
3. Wale PL, Gardner DK. The effects of chemical and physical factors on mammalian embryo culture and their importance for the practice of assisted human reproduction. Hum Reprod Update 2016;22:2-22. [DOI:10.1093/humupd/dmv034]
4. Byers SL, Payson SJ, Taft RA. Performance of ten inbred mouse strains following assisted reproductive technologies (ARTs). Theriogenology 2006;65:1716-26 . [DOI:10.1016/j.theriogenology.2005.09.016]
5. Gates AH, Bozarth JL. Ovulation in the PMSG-treated immature mouse: effect of dose, age, weight, puberty, season and strain (BALB/c, 129 and C129F1 hybrid). Biol Reprod 1978;18:497-505. [DOI:10.1095/biolreprod18.3.497]
6. Nagy A, Gertsenstein M, Vintersten K, Behringer R, Editors. Manipulating the mouse embryo: a laboratory manual. New York: Press Cold Spring Harbor: 2003.
7. Wilson ED, Zarrow M. Comparison of superovulation in the immature mouse and rat. Reproduction 1962;3:148-58. [DOI:10.1530/jrf.0.0030148]
8. Zarrow M, LEE CALDWELL A, Hafez E, Pincus G. Superovulation in the immature rat as a possible assay for LH and HCG. Endocrinology 1958;63:748-58. [DOI:10.1210/endo-63-6-748]
9. Ozgunen K, Erdogan S, Mazmanoglu N, Pamuk I, Logoglu G, Ozgunen T. Effect of gonadotrophin dose on oocyte retrieval in superovulated BALB/c mice. Theriogenology 2001;56:435-45. [DOI:10.1016/S0093-691X(01)00575-1]
10. Spearow JL, Barkley M. Genetic control of hormone-induced ovulation rate in mice. Biol Reprod 1999;61:851-6. [DOI:10.1095/biolreprod61.4.851]
11. Hashlamoun L, Killian G. Effects of timing of ovum recovery, cumulus cells, sperm pre incubation time, and pH on in vitro fertilization in C57BL/6 mice. Arch Androl 1985;15:159-71. [DOI:10.3109/01485018508986906]
12. Martin-Coello J, Gonzalez R, Crespo C, Gomendio M, Roldan E. Superovulation and in vitro oocyte maturation in three species of mice (Mus musculus, Mus spretus and Mus spicilegus). Theriogenology 2008;70:1004-13. [DOI:10.1016/j.theriogenology.2008.06.002]
13. Kameyama Y, Arai K, Ishijima Y. Interval between PMSG priming and hCG injection in superovulation of the mongolian Gerbil. J Mamm Ova Res 2004;21:105-9. [DOI:10.1274/jmor.21.105]
14. Wu H, Chou C, Lin C-S, Huang M. Effects of glucose concentration on in vitro fertilization in BALB/c mice. Reprod Domest Anim 2003;38:470-4. [DOI:10.1046/j.0936-6768.2003.00465.x]
15. Kito S, Ohta Y. In vitro fertilization in inbred BALB/c mice I: isotonic osmolarity and increased calcium-enhanced sperm penetration through the zona pellucida and male pronuclear formation. Zygote 2008;16:249. [DOI:10.1017/S0967199408004607]
16. Uranga J, Arechaga J. Comparative analysis of in vitro development of outbred mouse embryos cultured in Krebs-Ringer or tyrode-derived media. Reprod Nutr Dev 1997;37:41-9. [DOI:10.1051/rnd:19970105]
17. Nakazawa T, Ohashi K, Yamada M, Shinoda S, Saji F, Murata Y, et al. Effect of different concentrations of amino acids in human serum and follicular fluid on the development of one-cell mouse embryos in vitro. J Reprod Fertil 1997;111:327-32. [DOI:10.1530/jrf.0.1110327]
18. Golkar-Narenji A, Gourabi H, Eimani H, Barekati Z, Akhlaghi A. Superovulation, in vitro fertilization (IVF) and in vitro development (IVD) protocols for inbred BALB/cJ mice in comparison with outbred NMRI mice. Reprod Med Biol 2012;11:185-92. [DOI:10.1007/s12522-012-0127-8]
19. Tuttle AH, Philip VM, Chesler EJ, Mogil JS. Comparing phenotypic variation between inbred and outbred mice. Nat Methods 2018;15:994-6. [DOI:10.1038/s41592-018-0224-7]
20. Jensen VS, Porsgaard T, Lykkesfeldt J, Hvid H. Rodent model choice has major impact on variability of standard preclinical readouts associated with diabetes and obesity research. Am J Transl Res 2016;8:3574.
21. Dekel Y, Glucksam Y, Margalit R. Novel fibrillar insulin formulations for oral administration: Formulation and in vivo studies in diabetic mice. J Control Release 2010;143:128-35. [DOI:10.1016/j.jconrel.2009.12.018]
22. Chia R, Achilli F, Festing MF, Fisher EM. The origins and uses of mouse outbred stocks. Nat genet 2005;37:1181-6. [DOI:10.1038/ng1665]
23. Johnson M. Laboratory mice and rats. Mater Methods 2012;2: 113. [DOI:10.13070/mm.en.2.113]
24. Kabayama H, Takeuchi M, Tokushige N, Muramatsu S-i, Kabayama M, Fukuda M, et al. An ultra-stable cytoplasmic antibody engineered for in vivo applications. Nat Commun 2020;11:1-20. [DOI:10.1038/s41467-019-13654-9]
25. Lu Y, Brommer B, Tian X, Krishnan A, Meer M, Wang C, et al. Reprogramming to recover youthful epigenetic information and restore vision. Nature 2020;588:124-9. [DOI:10.1038/s41586-020-2975-4]
26. Luther A, Urfer M, Zahn M, Müller M, Wang S-Y, Mondal M, et al. Chimeric peptidomimetic antibiotics against Gram-negative bacteria. Nature 2019;576:452-8. [DOI:10.1038/s41586-019-1665-6]
27. Labonté B, Abdallah K, Maussion G, Yerko V, Yang J, Bittar T, et al. Regulation of impulsive and aggressive behaviours by a novel lncRNA. Mol Psychiatry 2020:1-14.
28. Patzke C, Brockmann MM, Dai J, Gan KJ, Grauel MK, Fenske P, et al. Neuromodulator signaling bidirectionally controls vesicle numbers in human synapses. Cell 2019;179:498-513. [DOI:10.1016/j.cell.2019.09.011]
29. Kidder BL. In vitro maturation and in vitro fertilization of mouse oocytes and preimplantation embryo culture. Methods Mol Biol 2014;1150:191-9. [DOI:10.1007/978-1-4939-0512-6_12]
30. Kito S, Hayao T, Noguchi-Kawasaki Y, Ohta Y, Hideki U, Tateno S. Improved in vitro fertilization and development by use of modified human tubal fluid and applicability of pronucleate embryos for cryopreservation by rapid freezing in inbred mice. Comp Med 2004;54:564-70.
31. Khalili MA, Anvari M. The effect of in vitro culture on cleavage rates and morphology of the in vivo-developed embryos in mice. IJRM 2007; 5: 17-22.
32. Sapienza C, Peterson AC, Rossant J, Balling R. Degree of methylation of transgenes is dependent on gamete of origin. Nature 1987;328:251-4. [DOI:10.1038/328251a0]



XML   English Abstract   Print



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 32، شماره 1 - ( بهار 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها