[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 31، شماره 3 - ( پائيز 1400 ) ::
جلد 31 شماره 3 صفحات 275-266 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی رفتار سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق شده از ژله وارتون بند ناف بر داربست نانوفیبر Poly (lactic Acid)Wax
تینا شفاف1، الهام حویزی 2، سیدرضا کاظمی نژاد3
1- دانشجوی دکتری، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
2- دانشیار، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران ، e.hoveizi@yahoo.com
3- دانشیار، گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
چکیده:   (292 مشاهده)
چکیده
سابقه و هدف: سلول­های بنیادی مزانشیمی سلول­های استرومایی چندتوانی هستند که پتانسیل  تبدیل شدن به انواعی از سلول­ها را دارند. امروزه استفاده از سلول­های بنیادی مشتق شده از ژله وارتون بند ناف(WJ-MSCs) به دلیل مزیت­های فراوان  به عنوان منبعی قابل دسترس و جدید مطرح است. به علاوه، مطالعات نشان داده­اند استفاده از داربست­های مناسب می­تواند نقش مؤثری در افزایش بقا، تکثیر و تمایز سلول‌ها داشته باشد. هدف تحقیق حاضر بررسی میزان بقا وچسبندگی WJ-MSCs بر داربست پلی لاکتیک اسید/ موم (PLA/Wax) بود.
روش بررسی: داربست PLA/Wax با نسبت 7:3 با استفاده از روش الکتروریسی  ساخته شد و میزان چسبندگی و بقای سلول های استخراج شده بر این داربست ها با استفاده از میکروسکوپ الکترونی SEM و MTT بررسی شد. 
یافته ­ها: نتایج حاصل از مطالعات میکروسکوپ الکترونی نشان دادند که الیاف به صورت همگن، یکنواخت، فاقد بید و از کیفیت بالایی برخوردار هستند و همچنین افزایش موم به PLA‌ باعث کاهش قابل توجهی در قطر الیاف شده است. این مطالعات تایید کرد که سلول­ها در تعداد زیاد و با گستردگی مناسبی بر داربست اتصال یافته­ اند. نتایج حاصل از MTT نشان دهنده زیست سازگاری مناسب داربست ساخته شده با سلول­ها است و افزایش معنی­داری در میزان بقاء سلول­های مزانشیمی در طی دوره مشاهده شد.
نتیجه­ گیری: به طور کلی می­توان نتیجه گرفت استفاده از داربست PLA/Wax، چسبندگی، بقا و تکثیر سلول­ها را بهبود می­بخشد و این پتانسیل را دارد که در مطالعات آینده به­عنوان یک کاندید مهم در جهت افزایش بازده کشت سه بعدی سلول­ها به منظور درمان بیماری­ها در نظر گرفته شود.
واژه‌های کلیدی: بقای سلولی، داربست PLA/Wax، ژله وارتون بند ناف، چسبندگی، سلول‌های بنیادی مزانشیمی
متن کامل [PDF 443 kb]   (161 دریافت)    
نيمه آزمايشي : تجربي | موضوع مقاله: زيست شناسي جانوري
دریافت: 1399/8/10 | پذیرش: 1400/2/8 | انتشار: 1400/6/10
فهرست منابع
1. Bonzo LV, Ferrero I, Cravanzola C, Mareschi K, Rustichell D, Novo E, et al. Human mesenchymal stem cells as a two-edged sword in hepatic regenerative medicine: engraftment and hepatocyte differentiation versus profibrogenic potential. Gut 2008; 57: 223-31. [DOI:10.1136/gut.2006.111617]
2. Chao KC, Chao KF, Fu YS, Liu SH. Islet-like clusters derived from mesenchymal stem cells in Wharton's Jelly of the human umbilical cord for transplantation to control type 1 diabetes. PloS one 2008; 3: e1451. [DOI:10.1371/journal.pone.0001451]
3. Xu W, Zhang X, Qian H, Zhu W, Sun X, Hu J, et al. Mesenchymal stern cells from adult human bone marrow differentiate into a cardiomyocyte phenotype in vitro. Exp Biol Med 2004; 229:623-31. [DOI:10.1177/153537020422900706]
4. Reed SA, Johnson SE. Equine umbilical cord blood contains a population of stem cells that express Oct4 and differentiate into mesodermal and endodermal cell types. J Cell Physiol 2008; 215:329-36. [DOI:10.1002/jcp.21312]
5. Choong P, Mok P, Cheong S, Leong C, Then K. Generating neuron-like cells from BM-derived mesenchymal stromal cells in vitro. Cytotherapy 2007; 9:170-83. [DOI:10.1080/14653240701196829]
6. Beeravolu N, McKee C, Alamri A, Mikhael S, Brown C, Perez-Cruet M, Chaudhry GR. Isolation and Characterization of Mesenchymal Stromal Cells from Human Umbilical Cord and Fetal Placenta. J Vis Exp 2017; 3:55224. [DOI:10.3791/55224]
7. El Edel R, Khodeer S, Noreldin R, Ammar H. Isolation of Mesenchymal Stem Cells from Wharton's Jelly in Comparison with Bone Marrow and Their Endothelial Differentiation. IOSR Journal of Biotechnology and Biochemistry 2017; 3:50-57. [DOI:10.9790/264X-0301015057]
8. Himal I, Goyal U, Ta M. Evaluating Wharton's Jelly-Derived Mesenchymal Stem Cell's Survival, Migration, and Expression of Wound Repair Markers under Conditions of Ischemia-Like Stress. Stem Cells Int 2017; 17: 5259849. [DOI:10.1155/2017/5259849]
9. Kalaszczynska I, Ferdyn K. Wharton's jelly derived mesenchymal stem cells: future of regenerative medicine? Recent findings and clinical significance. Biomed Res Int 2015; 2015:430847. [DOI:10.1155/2015/430847]
10. Khademhosseini A, Langer R. A decade of progress in tissue engineering. Nature Protocols 2016; 11:1775-81. [DOI:10.1038/nprot.2016.123]
11. Chai JH, Wu QS. Electrospinning preparation and electrical and biological properties of ferrocene/poly(vinylpyrrolidone) composite nanofibers. Beilstein J Nanotechnol 2013;4:189-97. [DOI:10.3762/bjnano.4.19]
12. Antoni D, Burckel H, Josset E, Noel G. Three-dimensional cell culture: a breakthrough in vivo. Int J Mol Sci 2015; 16:5517-27. [DOI:10.3390/ijms16035517]
13. Cai S, Xu H, Jiang Q, Yang Y. Novel 3D electrospun scaffolds with fibers oriented randomly and evenly in three dimensions to closely mimic the unique architectures of extracellular matrices in soft tissues: fabrication and mechanism study. Langmuir 2013; 29:2311-8. [DOI:10.1021/la304414j]
14. Jiang T, Carbone EJ, Lo KW-H, Laurencin CT. Electrospinning of polymer nanofibers for tissue regeneration. Prog Polym Sci 2015; 46:1-24. [DOI:10.1016/j.progpolymsci.2014.12.001]
15. Hoveizi E, Nabiuni M, Parivar K, Ai J, Massumi M. Definitive endoderm differentiation of human-induced pluripotent stem cells using signaling molecules and IDE1 in three-dimensional polymer scaffold. J Biomed Mater Res A 2014 ;102:4027-36. [DOI:10.1002/jbm.a.35039]
16. Asmani MN, Ai J, Amoabediny G, Noroozi A, Azami M, Ebrahimi-Barough S, et al. Three-dimensional culture of differentiated endometrial stromal cells to oligodendrocyte progenitor cells (OPCs) in fibrin hydrogel. Cell Biol Int 2013; 37:1340-9. [DOI:10.1002/cbin.10171]
17. Sánchez-González S, Diban N, Urtiaga A. Hydrolytic Degradation and Mechanical Stability of Poly(ε-Caprolactone)/Reduced Graphene Oxide Membranes as Scaffolds for In Vitro Neural Tissue Regeneration. Membranes (Basel) 2018;8:12. [DOI:10.3390/membranes8010012]
18. Salehi M, Naseri-Nosar M, Ebrahimi-Barough S, Nourani M, Khojasteh A, Farzamfar S, et al. Polyurethane/Gelatin Nanofibrils Neural Guidance Conduit Containing Platelet-Rich Plasma and Melatonin for Transplantation of Schwann Cells. Cell Mol Neurobiol 2018; 38:703-13. [DOI:10.1007/s10571-017-0535-8]
19. Gao N, LeLay J, Vatamaniuk MZ, Rieck S, Friedman JR, Kaestner KH. Dynamic regulation of Pdx1 enhancers by Foxa1 and Foxa2 is essential for pancreas development. Genes & development 2008; 22:3435-48. [DOI:10.1101/gad.1752608]
20. Lotfy M. Biological activity of bee propolis in health and disease. Asian Pac J Cancer Prev 2006; 7:22-31.
21. Farooqui T, Farooqui AA. Beneficial effects of propolis on human health and neurological diseases. Front Biosci 2012; 4:779-93. [DOI:10.2741/e418]
22. Hoveizi E, Ebrahimi‐Barough S. Embryonic stem cells differentiated into neuron‐like cells using SB431542 small molecule on nanofibrous PLA/CS/Wax scaffold. J Cell Physiol 2019; 234:19565-73. [DOI:10.1002/jcp.28554]
23. Hoveizi E, Tavakol S. Therapeutic potential of human mesenchymal stem cells derived beta cell precursors on a nanofibrous scaffold: an approach to treat diabetes mellitus. J Cell Physiol 2019; 234:10196-204. [DOI:10.1002/jcp.27689]
24. Hoveizi E, Khodadadi S, Tavakol S, Karima O, Nasiri-Khalili MA. Small Molecules Differentiate Definitive Endoderm from Human Induced Pluripotent Stem Cells on PCL Scaffold. Appl Biochem Biotechnol 2014: 173: 1727-36. [DOI:10.1007/s12010-014-0960-9]
25. Farzaneh Z, Pournasr B, Ebrahimi M, Aghdami N, Baharvand H. Enhanced functions of human embryonic stem cell-derived hepatocyte-like cells on three-dimensional nanofibrillar surfaces. Stem Cell Rev Rep 2010;6:601-10. [DOI:10.1007/s12015-010-9179-5]
26. Benatti ACB, Pattaro AF, Rodrigues AA, Xavier MV, Kaasi A, Barbosa MIR, et al. Bioreabsorbable polymers for tissue engineering: PLA, PGA, and their copolymers. Biomed Mater Eng 2019; 83-116. [DOI:10.1016/B978-0-12-816901-8.00004-3]
27. Abudula T, Saeed U, Memic A, Gauthaman K, Hussain MA, Al-Turaif H. Electrospun cellulose Nano fibril reinforced PLA/PBS composite scaffold for vascular tissue engineering. J Polym Res 2019; 26:110. [DOI:10.1007/s10965-019-1772-y]
28. Teng YD, Lavik EB, Qu X, Park KI, Ourednik J, Zurakowski D, et al. Functional recovery following traumatic spinal cord injury mediated by a unique polymer scaffold seeded with neural stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences (PNAS). 2002; 99:3024-9. [DOI:10.1073/pnas.052678899]
29. Niklason L, Gao J, Abbott W, Hirschi K, Houser S, Marini R, et al. Functional arteries grown in vitro. Science 1999; 284:489-93. [DOI:10.1126/science.284.5413.489]
30. Hoveizi E, Nabiuni M, Parivar K, Rajabi-Zeleti S, Tavakol S. Functionalisation and surface modification of electrospun polylactic acid scaffold for tissue engineering. Cell Biol Int 2014; 38:41-9. [DOI:10.1002/cbin.10178]
31. Shalumon K, Deepthi S, Anupama M, Nair S, Jayakumar R, Chennazhi K. Fabrication of poly (l-lactic acid)/gelatin composite tubular scaffolds for vascular tissue engineering. Int J Biol Macromol 2015; 72:1048-55. [DOI:10.1016/j.ijbiomac.2014.09.058]
32. Sadeghi AR, Nokhasteh S, Molavi AM, Khorsand-Ghayeni M, Naderi-Meshkin H, Mahdizadeh A. Surface modification of electrospun PLGA scaffold with collagen for bioengineered skin substitutes. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl 2016;66:130-137. [DOI:10.1016/j.msec.2016.04.073]
33. Carrasco-Torres G, Valdés-Madrigal MA, Vásquez-Garzón VR, Baltiérrez-Hoyos R, la Cruz-Burelo D, Román-Doval R, et al. Effect of Silk Fibroin on Cell Viability in Electrospun Scaffolds of Polyethylene Oxide. Polymers 2019; 11:451. [DOI:10.3390/polym11030451]
34. Stenhamre H, Thorvaldsson A, Enochson L, Walkenström P, Lindahl A, Brittberg M, et al. Nanosized fibers' effect on adult human articular chondrocytes behavior. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl 2013;33:1539-45. [DOI:10.1016/j.msec.2012.12.059]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Shafaf T, Hoveizi E, Kazeminejad S R. Evaluation of behavior of human umbilical cord-Wharton’s jelly mesenchymal stem cell on electrospun poly (lactic acid)wax nanofibers scaffold. MEDICAL SCIENCES. 2021; 31 (3) :266-275
URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-1827-fa.html

شفاف تینا، حویزی الهام، کاظمی نژاد سیدرضا. بررسی رفتار سلول های بنیادی مزانشیمی مشتق شده از ژله وارتون بند ناف بر داربست نانوفیبر Poly (lactic Acid)Wax. فصلنامه علوم پزشکی. 1400; 31 (3) :275-266

URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-1827-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 31، شماره 3 - ( پائيز 1400 ) برگشت به فهرست نسخه ها
فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران Medical Science Journal of Islamic Azad Univesity - Tehran Medical Branch
Persian site map - English site map - Created in 0.04 seconds with 30 queries by YEKTAWEB 4355