[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای داوران::
ثبت نام ::
اشتراک::
اطلاعات نمایه::
برای نویسندگان::
فرآیند چاپ::
پست الکترونیک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 36، شماره 2 - ( تابستان 1405 ) ::
جلد 36 شماره 2 صفحات 165-154 برگشت به فهرست نسخه ها
ررسی اثرپلاسمای اتمسفر سرد با استفاده از گاز هلیوم روی رده سلولی دهانه رحم
مهسا وطنی1 ، سیم زر حسین زاده2 ، امیرحسین ساری1 ، اعظم رحیم پور3 ، حمیدرضا قمی مرودشتی4
1- گروه فیزیک، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات مهندسی بافت و نانوبیو تکنولوژی پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران - دانشکده تکنولوژی در پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران ، symzar.hosseinzadeh@gmail.com
3- مرکز تحقیقات مهندسی بافت و نانوبیو تکنولوژی پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران - دانشکده تکنولوژی در پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران
4- انیستیتو تحقیقاتی لیزر و پلاسما، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
چکیده:   (345 مشاهده)
سابقه و هدف: سرطان دهانه رحم به عنوان دومین بدخیمی شایع در زنان پس از سرطان سینه شناخته شده است و میزان بروز آن رو به افزایش است. در اینجا، برای اولین بار، تأثیر نوع پلاسمای مربوطه بر روی رده سلولی انسان (HeLa)  در حضور پلاسمای سرد He بررسی شد.
روش بررسی: OES توسعه گونه‌های رادیکالی N2I2+، N2II1-، He• و O-• را تأیید کرد. اثرات بیولوژیکی با استفاده از 3-[4،5-دی متیل تیازول-2-ایل]-2،5 دی فنیل تترازولیوم بروماید (MTT)، 2،2-دی فنیل-1-پیکریل هیدرازیل (DPPH) و PCR در زمان واقعی بررسی شد. 
یافته­ها: چگالی الکترون و دما با استفاده از روش پهن‌شدگی اشتارک در فشار اتمسفر در دو خط انتشار اندازه‌گیری شدند. به طور کلی، این روش بر اساس پهن‌شدگی اشتارک تعریف می‌شود که وابسته به دما و چگالی الکترون است. در MTT، اثر آپوپتوزی پلاسما نشان داد که با کمترین فاصله از جت (3 سانتی‌متر) و طولانی‌ترین زمان تیمار (3 دقیقه) شکل سلول را به نوع گرد فروپاشیده تبدیل کرد و سلول‌ها چسبندگی خود را با گذشت زمان از دست دادند. هنگام اندازه‌گیری رادیکال باقی‌مانده تولید شده توسط DPPH، تشکیل رادیکال بیشتر زمانی رخ داد که زمان انکوباسیون از 30 ثانیه به 60 ثانیه افزایش یافت. در PCR  زمان واقعی بالاترین سطح بیان p53، Bax و کاسپاز 3/8 را پس از 60 ثانیه تأیید کرد. بیان Bcl2 به عنوان یک ژن ضد آپوپتوز مقدار قابل توجهی پایین‌تری را نشان داد.
نتیجه­گیری: در مجموع، نتایج تأیید کردند که پارامترهای پلاسمای سرد عوامل ضروری هستند که باید برای دستیابی به نتایج درمانی در آزمایشات بالینی بهینه شوند.
 
واژه‌های کلیدی: سرطان دهانه رحم، پلاسمای اتمسفری سرد، رادیکال‌های آزاد، پهن شدگی اشتارک
متن کامل [PDF 1674 kb]   (83 دریافت)    
نيمه آزمايشي : تحليلي/مقطعي/توصيفي | موضوع مقاله: انكولوژي
دریافت: 1404/5/26 | پذیرش: 1404/8/27 | انتشار: 1405/4/10
فهرست منابع
1. Negrescu AM, Zampieri L, Martines E, Cimpean A. The Potential of a Novel Cold Atmospheric Plasma Jet as a Feasible Therapeutic Strategy for Gingivitis-A Cell-Based Study. Cells 2024;13:1970. [DOI:10.3390/cells13231970]
2. Filipić A, Gutierrez-Aguirre I, Primc G, Mozetič M, Dobnik D. Cold plasma, a new hope in the field of virus inactivation. Trends Biotechnol 2020; 38: 1278-91. [DOI:10.1016/j.tibtech.2020.04.003]
3. Dong F, Zhang J, Wang K, Liu Z, Guo J, Zhang J. Cold plasma gas loaded microbubbles as a novel ultrasound contrast agent. Nanoscale 2019; 11: 1123-30. [DOI:10.1039/C8NR08451C]
4. Bettencourt JA, ed. Fundamentals of Plasma Physics. 3rd ed. Berlin: Springer; 2004.
5. Aleinik A, Baikov A, Dambaev G, Semichev E, Bushlanov P. Liver hemostasis by using cold plasma. Surg Innov 2017; 24: 253-58. [DOI:10.1177/1553350617691710]
6. Bekeschus S, Schmidt A, Bethge L, Masur K, von Woedtke T, Hasse S, et al. Redox stimulation of human THP-1 monocytes in response to cold physical plasma. Oxid Med Cell Longev 2016;2016:5910695. [DOI:10.1155/2016/5910695]
7. Masur K, von Behr M, Bekeschus S, Weltmann KD, Hackbarth C, Heidecke CD, et al. Synergistic inhibition of tumor cell proliferation by cold plasma and gemcitabine. Plasma Process Polym 2015; 12: 1377-82. [DOI:10.1002/ppap.201500123]
8. Wang M, Cheng X, Zhu W, Holmes B, Keidar M, Zhang LG. Design of biomimetic and bioactive cold plasma-modified nanostructured scaffolds for enhanced osteogenic differentiation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells. Tissue Eng Part A 2014; 20: 1060-71. [DOI:10.1089/ten.tea.2013.0235]
9. Yan D, Sherman JH, Keidar M. Cold atmospheric plasma, a novel promising anti-cancer treatment modality. Oncotarget 2017; 8: 15977. [DOI:10.18632/oncotarget.13304]
10. Kim SJ, Chung T. Cold atmospheric plasma jet-generated RONS and their selective effects on normal and carcinoma cells. Sci Rep 2016; 6: 1-14. [DOI:10.1038/srep20332]
11. Nitsch A, Strakeljahn S, Jacoby JM, Sieb KF, Mustea A, Bekeschus S, et al. New Approach against Chondrosoma Cells-Cold Plasma Treatment Inhibits Cell Motility and Metabolism, and Leads to Apoptosis. Biomedicines 2022; 10: 688. [DOI:10.3390/biomedicines10030688]
12. Dubey SK, Dabholkar N, Pal UN, Singhvi G, Sharma NK, Puri A, et al. Emerging innovations in cold plasma therapy against cancer: a paradigm shift. Drug Discov Today 2022;27:2425-39. [DOI:10.1016/j.drudis.2022.05.014]
13. Baniya HB, Khadka P, Panday S, Nepal A, Guragain RP, Lamichhane TR, et al. Characterization of Cold Atmospheric Pressure Plasma Technology and Its Anticancer Properties. Plasma Medicine 2021; 11: 53-62. [DOI:10.1615/PlasmaMed.2021040971]
14. Ecaterina Tomaziu-Todosia Anton, Gabriel-Ioan Anton, Ioana-Sadiye Scripcariu, Irina Dumitrașcu, Dragos Viorel Scripcariu, Ioana-Miruna Balmus ,et al, Oxidative Stress, Inflammation, and Antioxidant Strategies in Cervical Cancer-A Narrative Review. Int J Mol Sci 2025;26:4961. [DOI:10.3390/ijms26104961]
15. Mashayekh S, Rajaee H, Akhlaghi M, Shokri B, Hassan ZM. Atmospheric-pressure plasma jet characterization and applications on melanoma cancer treatment (B/16-F10). Physics of Plasmas 2015; 22: 093508. [DOI:10.1063/1.4930536]
16. Fridman G, Shereshevsky A, Jost MM, Brooks AD, Fridman A, Gutsol A, et al. Floating electrode dielectric barrier discharge plasma in air promoting apoptotic behavior in melanoma skin cancer cell lines. Plasma Chemistry and Plasma Processing 2007; 27: 163-76. [DOI:10.1007/s11090-007-9048-4]
17. Sophie Peeters, Peter B Wu, Blake Haist, Amber Armellini, Wi Jin Kim,et al. Cold atmospheric plasma effectively kills chordoma cells through induction of intracellular reactive oxygen species, SCi Rep 2025;15:20838. [DOI:10.1038/s41598-025-05916-y]
18. Moghanloo M, Iranbakhsh A, Ebadi M, Nejad Satari T, Oraghi Ardebili Z. Seed priming with cold plasma and supplementation of culture medium with silicon nanoparticle modified growth, physiology, and anatomy in Astragalus fridae as an endangered species. Acta Physiologiae Plantarum 2019; 41: 1-13. [DOI:10.1007/s11738-019-2846-5]
19. Zhang N, Sun F, Zhu L, Planche MP, Liao H, Dong C, et al. Electron Temperature and Density of the Plasma Measured by Optical Emission Spectroscopy in VLPPS Conditions. J Therm Spray Tech 2011;20:1321-27. [DOI:10.1007/s11666-011-9681-6]
20. National Institute of Standards and Technology. NIST: Atomic Spectra Database Lines Form. Available from: https://physics.nist.gov/PhysRefData/ASD/ lines_form.html.
21. Choi BBR, Choi JH, Hong JW, Song KW, Lee HJ, Kim UK, et al. Selective killing of melanoma cells with non-thermal atmospheric pressure plasma and p-FAK antibody conjugated gold nanoparticles. Int J Med Sci 2017; 14: 1101-109. [DOI:10.7150/ijms.20104]
22. Qin J, Zhang J, Fan G, Wang X, Zhang Y, Wang L, et al. Cold Atmospheric Plasma Activates Selective Photothermal Therapy of Cancer. Molecules 2022; 27: 5941. [DOI:10.3390/molecules27185941]
23. Labay C, Roldán M, Tampieri F, Stancampiano A, Bocanegra PE, Ginebra M-P, et al. Enhanced generation of reactive species by cold plasma in gelatin solutions for selective cancer cell death. ACS Appl Mater Interfaces 2020; 12: 47256-69. [DOI:10.1021/acsami.0c12930]
24. Kaushik NK, Kaushik N, Yoo KC, Uddin N, Kim JS, Lee SJ, et al. Low doses of PEG-coated gold nanoparticles sensitize solid tumors to cold plasma by blocking the PI3K/AKT-driven signaling axis to suppress cellular transformation by inhibiting growth and EMT. Biomaterials 2016; 87: 118-30. [DOI:10.1016/j.biomaterials.2016.02.014]
25. Park N-S, Yun S-E, Lee H-Y, Lee HJ, Choi J-H, Kim G-C. No-ozone cold plasma can kill oral pathogenic microbes in H2O2-dependent and independent manner. Sci Rep 2022; 12: 1-15. [DOI:10.1038/s41598-022-11665-z]
26. Rehman MU, Jawaid P, Uchiyama H, Kondo T. Comparison of free radicals formation induced by cold atmospheric plasma, ultrasound, and ionizing radiation. Arch Biochem Biophys 2016; 605: 19-25. [DOI:10.1016/j.abb.2016.04.005]
27. Chresta CM, Masters JR, Hickman JA. Hypersensitivity of human testicular tumors to etoposide-induced apoptosis is associated with functional p53 and a high Bax: Bcl-2 ratio. Cancer Res 1996; 56: 1834-41. [DOI:10.1038/nm0796-745]
28. Tan BL, Norhaizan ME, Huynh K, Heshu SR, Yeap SK, Hazilawati H, et al. Water extract of brewers' rice induces apoptosis in human colorectal cancer cells via activation of caspase-3 and caspase-8 and downregulates the Wnt/β-catenin downstream signaling pathway in brewers' rice-treated rats with azoxymethane-induced colon carcinogenesis. BMC Complement Altern Med 2015; 15: 1-14. [DOI:10.1186/s12906-015-0730-4]
29. Bélanger S, Côté M, Lane D, L'Espérance S, Rancourt C, Piché A. Bcl-2 decreases cell proliferation and promotes accumulation of cells in S phase without affecting the rate of apoptosis in human ovarian carcinoma cells. Gynecol Oncol 2005; 97: 796-806. [DOI:10.1016/j.ygyno.2005.02.018]
30. Sitarek P, Skała E, Toma M, Wielanek M, Szemraj J, Nieborowska-Skorska M, et al. A preliminary study of apoptosis induction in glioma cells via alteration of the Bax/Bcl-2-p53 axis by transformed and non-transformed root extracts of Leonurus sibiricus L. Tumor Biol 2016; 37: 8753-64. [DOI:10.1007/s13277-015-4714-2]
31. Jalili A, Irani S, Mirfakhraie R. Combination of cold atmospheric plasma and iron nanoparticles in breast cancer: Gene expression and apoptosis study. Onco Targets Ther 2016; 5911-17. [DOI:10.2147/OTT.S95644]
32. Shrestha M, Park P-H. p53 signaling is involved in leptin-induced growth of hepatic and breast cancer cells. Korean J Physiol Pharmacol 2016; 20: 487-98. [DOI:10.4196/kjpp.2016.20.5.487]
33. Schmidt A, Bekeschus S, Jarick K, Hasse S, von Woedtke T, Wende K. Cold physical plasma modulates p53 and mitogen-activated protein kinase signaling in keratinocytes. Oxid Med Cell Longev 2019; 2019: 7017363. [DOI:10.1155/2019/7017363]
34. Sajedi N, Homayoun M, Mohammadi F, Soleimani M. Myricetin exerts its apoptotic effects on MCF-7 breast cancer cells through evoking the BRCA1-GADD45 pathway. Asian Pac J Cancer Pre 2020; 21: 3461-68. [DOI:10.31557/APJCP.2020.21.12.3461]
35. Kaushik NK, Kaushik N, Yoo KC, Uddin N, Kim JS, Lee SJ, et al. Data on combination effect of PEG-coated gold nanoparticles and non-thermal plasma inhibit growth of solid tumors. Data Brief 2016; 9: 318-23. [DOI:10.1016/j.dib.2016.08.059]
36. Xu D, Xu Y, Cui Q, Liu D, Liu Z, Wang X, et al. Cold atmospheric plasma as a potential tool for multiple myeloma treatment. Oncotarget 2018; 9: 18002-17. [DOI:10.18632/oncotarget.24649]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Vatani M, Hosseinzadeh S, Sari A, Rahimpour A, Ghomi Marzdashti H. Research of the effect of cold atmospheric plasma using helium gas on cervical cell lines. MEDICAL SCIENCES 2026; 36 (2) :154-165
URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-2441-fa.html

وطنی مهسا، حسین زاده سیم زر، ساری امیرحسین، رحیم پور اعظم، قمی مرودشتی حمیدرضا. ررسی اثرپلاسمای اتمسفر سرد با استفاده از گاز هلیوم روی رده سلولی دهانه رحم. فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی تهران. 1405; 36 (2) :154-165

URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-2441-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 36، شماره 2 - ( تابستان 1405 ) برگشت به فهرست نسخه ها
فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران Medical Science Journal of Islamic Azad Univesity - Tehran Medical Branch
Persian site map - English site map - Created in 0.1 seconds with 37 queries by YEKTAWEB 4758