[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای داوران::
ثبت نام ::
اشتراک::
اطلاعات نمایه::
برای نویسندگان::
لینکهای مفید::
فرآیند چاپ::
پست الکترونیک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
:: دوره 32، شماره 4 - ( زمستان 1401 ) ::
جلد 32 شماره 4 صفحات 367-356 برگشت به فهرست نسخه ها
اثرات حفاظتی و تقویتی ویتامین E و سلنیوم در برابر صدمات بافتی و اکسیداتیو ناشی از سیپرمترین در بیضه موش صحرایی
سید امین موسوی1 ، علی لوئی منفرد 2، نعمت الله شاکرمی3
1- دانشجوی کارشناسی ارشد بافت شناسی، دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه ایلام، ایران
2- گروه بافت شناسی و باکتری شناسی، دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه ایلام، ایران ، a.loueimonfared@ilam.ac.ir
3- کارشناس ارشد بافت شناسی، تکنیسین آزمایشگاه، دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه ایلام،ایران
چکیده:   (1042 مشاهده)
سابقه و هدف: سیپرمترین حشره کشی است که در برنامه­های کنترل آفات به صورت گسترده مورد استفاده قرار می­گیرد. در مطالعات قبلی به اثرات مضر آن بر روی سیستم تناسلی نر اشاره شده است. بنابراین در تحقیق حاضر به منظور حفاظت از بیضه در برابر صدمات این سم، از ویتامین E و سلنیوم استفاده شد.
روش بررسی: 42 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار به 6 گروه تقسیم شدند: گروه اول، به عنوان شاهد؛ گروه دوم، دریافت‌کننده سیپرمترین به شکل گاواژ، به میزان mg/kg30 به مدت 42 روز؛ گروه سوم، دریافت‌کننده سیپرمترین به همراه ویتامینE به‌ میزان mg/kg 100 به صورت گاواژ؛ گروه چهارم، دریافت‌کننده سیپرمترین به همراه سلنیوم به‌ میزان mg/kg5/0، گروه پنجم، دریافت‌کننده سیپرمترین، ویتامینE و سلنیوم به روش‌های فوق و گروه ششم، دریافت‌کننده سلنیوم و ویتامینE در نظر گرفته شدند. در پایان دوره ابتدا حیوانات وزن‌گیری و سپس بیهوش شدند و جهت اندازه گیری هورمون‌ها و عوامل استرس اکسیداتیو خون گیری شدند. همچنین مقاطع بافتی به ضخامت 5 میکرون تهیه و با روش های H&E و مالوری تری کروم رنگ شدند. نتایج با نرم‌افزار SPSS تحلیل شدند و 05/0P< به عنوان اختلاف معنی‌دار در نظر گرفته شد. 
یافته ها: در گروه سیپرمترین؛ وزن بدن، اپی‌دیدیم، تراکم سلول های بیضه، مقادیر تستوسترون، LH و FSH و آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی کاهش یافت، اما میزانMDA بالا رفت. تجویز ویتامین E و سلنیوم به تنهایی نتوانست کاملا موجب حفاظت ساختار بیضه و بهبود تغییرات شود اما خوراندن همزمان این دو ترکیب، صدمات مذکور را به طور کامل برطرف کرد.
نتیجه گیری: ترکیب ویتامین E و سلنیوم در برابر صدمات بافتی و اکسیداتیو ناشی از سیپرمترین در بیضه موش صحرایی اثر حفاظتی و تقویتی دارند.
 
واژه‌های کلیدی: واژگان کلیدی: بافت‌شناسی،   بیضه،   سلنیوم، سیپرمترین، ویتامین E.
متن کامل [PDF 539 kb]   (531 دریافت)    
نيمه آزمايشي : تجربي | موضوع مقاله: بافت شناسي
دریافت: 1401/3/22 | پذیرش: 1401/5/30 | انتشار: 1401/10/10
فهرست منابع
1. Li YF, Pan C, Hu JX, Li J, Xu LC. Effects of cypermethrin on male reproductive system in adult rats. Biomed Environ Sci 2013;26(3):201-8. 2. Abd El-Hameed AM, Mahmoud HS. Cypermethrin induced apoptosis and testicular toxicity by upregulation of p53 in the brain and testis of male rats is alleviated by Sesame oil. J Taibah Univ Sci 2020;14:1, 1342-1349. 3. Wang X, Martinez MA, Dai M, Chen D, Ares I, Romero A, et al. Permethrin Induced Oxidative Stress and Toxicity and Metabolism. A Review. Environ Res 2016; 149:86-104. https://doi.org/10.1016/j.envres.2016.05.003 4. Wang Q, Shen JY, Zhang R, Hong JW, Li Z, Ding Z, Wang HX, Zhang JP, Zhang MR, Xu LC. Effects and mechanisms of pyrethroids on male reproductive system. Toxicol 2020; 30; 438:152460. https://doi.org/10.1016/j.tox.2020.152460 5. Li YF, Pan C, Hu JX, Li J, Xu LC. Effects of cypermethrin on male reproductive system in adult rats. Biomed Environ Sci 2013;26(3):201-8. 6. Abdel Razik RK, Mosallam EM, Hamed NA, Badawy MEI, Abo El-Saad MM. Testicular deficiency associated with exposure to cypermethrin, imidacloprid, and chlorpyrifos in adult rats. Environ Toxicol Pharmacol 2021;87: 103724. https://doi.org/10.1016/j.etap.2021.103724 7. Hoofnagle JH, Natta ML, Kleiner DE, Clark JM, Kowdley KV, Loomba R, et al. Vitamin E and changes in serum alanine aminotransferase levels in patients with nonalcoholic steatohepatitis. Aliment Pharmacol Ther 2013;38(2): 134-43. https://doi.org/10.1111/apt.12352 8. Gupta S, Kumar H, Soni J. Effect of Vitamin E and selenium supplementation on concentrations of plasma cortisol and erythrocyte lipid peroxides and the incidence of retained fetal membranes in crossbred dairy cattle. Theriogenol 2005; 1;64(6):1273-86. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.03.008 9. Hamza RZ, Al-Harbi MS. Monosodium glutamate induced testicular toxicity and the possible ameliorative role of vitamin E or selenium in male rats. Toxicol Rep 2014; 22(1):1037-1045. https://doi.org/10.1016/j.toxrep.2014.10.002 10. Wang X and Quinn PJ. Vitamin E and its function in membranes. Prog Lipid Res 1999; 38(4): 309-336. https://doi.org/10.1016/S0163-7827(99)00008-9 11. Qu YH, Jian LY, Ce L, Ma Y, Xu CC, Gao YF, Machaty Z, Luo HL. Identification of candidate genes in regulation of spermatogenesis in sheep testis following dietary vitamin E supplementation. Anim Reprod Sci 2019; 205:52-61. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.04.003 12. Boussada M, Ali RB, Said AB, Bokri K, Akacha AB, Dziri C, El May MV. Selenium and a newly synthesized Thiocyanoacetamide reduce Doxorubicin gonadotoxicity in male rat. Biomed Pharmacother 2017;89:1005-1017. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.03.002 13. Chavarro JE, Toth TL, Wright DL, et al. Body mass index in relation to semen quality, sperm DNA integrity, and serum reproductive hormone levels among men attending an infertility clinic. Fertil Steril 2010; 93 (7): 2222-31. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2009.01.100 14. Kirchhoff KT, Failing K, Goericke-Pesch S. Effect of dietary vitamin E and selenium supplementation on semen quality in Cairn Terriers with normospermia. Reprod Dom Anim 2017;52:945-952. https://doi.org/10.1111/rda.13000 15. Domosławska A, Zdunczyk S, Nizanski W, Jurczak A, Janowski T. Effect of selenium and vitamin E supplementation on semen quality in dogs with lowered fertility. Bull Vet Inst Pulawy 2015;59:85-90. https://doi.org/10.1515/bvip-2015-0013 16. Sukmawati Y, Arisanty D, Tofrizal A, Amir A. Vitamin E ameliorates testicular histological features and androgen binding protein levels in testicle of rats induced by allethrin. J Adv Vet Anim Res. 2019; 23;6(4):486-491. https://doi.org/10.5455/javar.2019.f372 17. Oda SS, El-Maddawy ZKh. Protective effect of vitamin E and selenium combination on deltamethrin-induced reproductive toxicity in male rats. Exp Toxicol Pathol 2012; 64:813-9. https://doi.org/10.1016/j.etp.2011.03.001 18. Wang XZ, Liu SS, Sun Y, Wu JY, Zhou YL, Zhang JH. Beta-cypermethrin impairs reproductive function in male mice by inducing oxidative stress. Theriogenol 2009; 15;72(5):599-611. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2009.04.016 19. Ateşşahin A. The Effects of Vitamin E and Selenium on Cypermethrin-Induced Oxidative Stress in Rats. Turk J Vet Anim Sci 2005; 29(2): 385-391. 20. Elsedawi BF, Hussein Y, Sabry MA et al. Effect of fluoxetine on the testes of adult albino rats and the possible protective role of curcumin. Anat Sci Int 2021;96, 187-196. https://doi.org/10.1007/s12565-020-00573-9 21. Evans G, Maxwell WMC. Handling and examination of semen. In: Maxwell WMC, editor. Salamon's artificial insemination of sheep and goats. Sydney, Australia: Butterworths; 1987; p. 93. 22. Bancroft J, Gamble M. Theory and practice of histological technique, 6th edn. Churchill Livingston, New York. 2008 23. Abou Elhamd AS, Sumayli S, Steger K, Ali AKM, Zayed AE. Effect of Khat (Catha edulis Forsk) extract on testicular maturation in pre-pubertal and pubertal rats: A morphological and biochemical study. Anat Histol Embryol 2021;50(2):271-283. https://doi.org/10.1111/ahe.12626 24. Ohkawa H, Ohishi N, Yagi K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal Biochem. 1979; 95(2):351-8. https://doi.org/10.1016/0003-2697(79)90738-3 25. Marklund S, Marklund G. Involvement of the superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. Eur J Biochem 1974; 16;47(3):469-74. https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1974.tb03714.x 26. Aebi H. Catalase in vitro. Methods Enzymol. 1984; 105:121-6. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(84)05016-3 27. Asadi N, Kheradmand A, Gholami M, Saidi SH, Mirhadi SA. Effect of royal jelly on testicular antioxidant enzymes activity, MDA level and spermatogenesis in rat experimental Varicocele model. Tissue Cell 2019;57:70-77. https://doi.org/10.1016/j.tice.2019.02.005 28. Anan HH, Zidan RA, Abd El-Baset SA, Ali MM. Ameliorative effect of zinc oxide nanoparticles on cyclophosphamide induced testicular injury in adult rat. Tissue Cell 2018; 54:80-93. https://doi.org/10.1016/j.tice.2018.08.006 29. Zhang X, Zhang T, Ren X, Chen X, Wang S, Qin C. Pyrethroids Toxicity to Male Reproductive System and Offspring as a Function of Oxidative Stress Induction: Rodent Studies. Front Endocrinol (Lausanne). 2021;12: 656106. https://doi.org/10.3389/fendo.2021.656106 30. Bian Q, Xu LC, Wang SL, Xia YK, Tan LF, Chen JF, et al. Study on the Relation Between Occupational Fenvalerate Exposure and Spermatozoa DNA Damage of Pesticide Factory Workers. Occup Environ Med (2004; 61(12):999-1005. https://doi.org/10.1136/oem.2004.014597 31. Matsuo N. Discovery and Development of Pyrethroid Insecticides. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci 2019; 95(7):378-400. https://doi.org/10.2183/pjab.95.027 32. Nakamura Y, Sugihara K, Sone T, Isobe M, Ohta S, Kitamura S. The in vitro metabolism of a pyrethroid insecticide, permethrin, and its hydrolysis products in rats. Toxicol 2007;235: 176-184. https://doi.org/10.1016/j.tox.2007.03.016 33. Tyler CR, Beresford N, van der Woning M, Sumpter JP, Thorpe K. Metabolism and environmental degradation of pyrethroid insecticides produce compounds with endocrine activities. Society of Environmental Toxicology and Chemistry 2000; 19: 801-809. https://doi.org/10.1002/etc.5620190404 34. Sanghamitra S, Hazra J, Upadhyay SN, Singh RK, Amal RC. Arsenic induced toxicity on testicular tissue of mice. Indian J Physiol Pharmacol 2008; 52(1):84-90. 35. Zhang SY, Ito Y, Yamanoshita O, Yanagiba Y, Kobayashi M, Taya K, et al. Permethrin may disrupt testosterone biosynthesis via mitochondrial membrane damage of Leydig cells in adult male mouse. Endocrinol 2007; 148: 3941-3949. https://doi.org/10.1210/en.2006-1497 36. Sayed Mostafa. Heba, Samia A. Abd El-Baset, Asmaa A. A. Kattaia, Rania A. Zidan and Mona M. A. Al Sadek. Efficacy of naringenin against permethrin induced testicular toxicity in rats. Int J Exp Pathol 2016; 37-49. https://doi.org/10.1111/iep.12168 37. Zitzmann M. Effects of testosterone replacement and its pharmacogenetics on physical performance and metabolism. Asian J Androl 2008; 10, 364‐72. https://doi.org/10.1111/j.1745-7262.2008.00405.x 38. El-Shenawy NS, AL Harbi MS, Hamza RZ. Effect of vitamin E and selenium separately and in combination on biochemical, immunological and histological changes induced by sodium azide in male mice. Exp Toxicol Pathol 2015; 67(1):65-76. https://doi.org/10.1016/j.etp.2014.10.005 39. Sodhi S, Sharma A, Brar APS, Brar RS. Effect of a tocopherol and selenium on antioxi-dant status, lipid peroxidation and hepatopathy induced by malathion in chicks. Pest Biochem Physiol 2008; 90:82-6. https://doi.org/10.1016/j.pestbp.2007.08.002 40. Kumar A, Sharma M. (Eds.) Basics of human andrology: a textbook. Springer Singapore, 1st Edition, https://doi.org/10.1007/978-981-10-3695-8. 2017. https://doi.org/10.1007/978-981-10-3695-8 41. Li DJ, Xu ZS, Zhang ZH, Huang QY. Antagonistic effects of vitamin E on the testicularinjury by cyclophosphamide in mice. Zhonghua Nan Ke Xue 2006; 12:318-22. 42. Blanco Rodríguez J, Martínez García C. Apoptosis precedes detachment of germ cells from the seminiferous epithelium after hormone suppression by short-term oestradiol treatment of rats. Int J Androl 1998; 21(2):109-15. https://doi.org/10.1046/j.1365-2605.1998.00109.x 43. Aitken RJ, Wingate JK, De Iuliis GN, Koppers AJ, McLaughlin EA. Cis unsaturated fatty acids stimulate reactive oxygen species generation and lipid peroxidation in human spermatozoa. J Clin Endocrinol Metab 2006; 91(10):4154-63. https://doi.org/10.1210/jc.2006-1309 44. Hozyen HF, Khalil HMA, Ghandour RA, Al-Mokaddem AK, Amer MS, Azouz RA. Nano Selenium Protects Against Deltamethrin-Induced Reproductive Toxicity in Male Rats. Toxicol Appl Pharmacol 2020; 408:115274. https://doi.org/10.1016/j.taap.2020.115274 45. Ravula AR, Yenugu S. Effect of oral administration of a mixture of pyrethroids at doses relevant to human exposure on the general and male reproductive physiology in the rat. Ecotoxicol Environ Saf 2021; 15;208:111714. https://doi.org/10.1016/j.ecoenv.2020.111714 [DOI:10.1080/16583655.2020.1822057]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mousavi S A, Louei Monfared A, Shakarami N. Protective and synergistic effects of vitamin E and selenium against tissue and oxidative damages induced by cypermethrin in the rat’s testis. MEDICAL SCIENCES 2022; 32 (4) :356-367
URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-2009-fa.html

موسوی سید امین، لوئی منفرد علی، شاکرمی نعمت الله. اثرات حفاظتی و تقویتی ویتامین E و سلنیوم در برابر صدمات بافتی و اکسیداتیو ناشی از سیپرمترین در بیضه موش صحرایی. فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی تهران. 1401; 32 (4) :356-367

URL: http://tmuj.iautmu.ac.ir/article-1-2009-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 32، شماره 4 - ( زمستان 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها
فصلنامه علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران Medical Science Journal of Islamic Azad Univesity - Tehran Medical Branch
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 37 queries by YEKTAWEB 4660